DIA |
Manhã (9:00 hs) |
Tarde (13:30 hs) |
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Teórica: Introdução
à Parasitologia,
Taxonomia e Evolução |
Mini-Teórica: Principais
grupos de
protozoários Prática: 1. Flagelados Vida livre: Euglena sp. Parasitas monoxênicos: Phytomonas serpens Trypanosoma dionisii Morfologia: Coloração com Giemsa Prática de simbiose 1: Crithidia deanei 2. Ciliados Vida livre: Paramecium sp. |
| 12/02 (quarta) | Teórica: Trypanosomatidae | Mini-teórica: Métodos
em Biologia Molecular
Extração de DNA, PCR, RAPD, Eletroforese de DNA, Clonagem e Seqüenciamento Prática: 1. Diferenciação celular - Infecção de células de mamíferos com T. dionisii 2. Vetores Hemípteros Triatomíneos infectados com T. rangeli e T. cruzi 3. Morfologia T. dionisii: cultura |
| 13/02 (quinta) | Teórica: Leishmania
spp.
Prática: 1. Morfologia: Leishmania sp.: cultura Promastigotas e amastigotas 2. Vetores: flebotomíneos |
Teórica: Tripanossomas africanos
Prática: 1. Camundongos infectados com T. evansi e T. b. brucei Microhematócrito Preparo de lâminas para corar com DAPI e extrair DNA Coleta de sangue em papel-filtro para extração de DNA Morfologia: Giemsa T. brucei, T. evansi, T. vivax e T. theileri |
| 14/02 (sexta) | Prática:
1. PCR - DNA de tripanossomatídeos Amplificação de seqüência do gene ribossômico 2. RAPD - tripanossomatídeos 3. Seqüenciamento de DNA Mini-Teórica: Métodos moleculares para diagnóstico e caracterização de parasitas |
Prática:
1. Eletroforese em gel de agarose: PCR e RAPD 2. Tripanossomas africanos: Coloração com DAPI 3. Extração de DNA de esfregaços de sangue em lâminas de vidro Extração de DNA de papel-filtro 4. Prática de simbiose (continuação): C. deanei |
| 17/02 (segunda) | Teórica: Plasmodium
spp. (P. falciparum,
P. vivax e P. berghei) Prática: 1. Camundongo infectado com P. berghei 2. Cultura de P. falciparum (preparar lâminas) |
Mini-Teórica: Vetores de
Malária
Prática: 1. Mosquito (Aedes aegypti) infectado com Plasmodium gallinaceum 2. Morfologia (Giemsa) Sangue, cultura, glândula salivar de mosquito 3. Gregarinas |
| 18/02 (terça) | Teórica: Toxoplasma gondii
Prática: 1. Continuação prática de diferenciação celular de T. dionisii |
Teórica: Cryptosporidium,
Cyclospora, Isospora e Eimeria
Prática: 1. Toxoplasma 2. Diagnóstico Cryptosporidium |
| 19/02 (quarta) | Teórica: Giardia, Trichomonas
e Amebas
Prática: 1. Fagocitose - Acanthamoeba sp. |
Prática:
1. Morfologia (trofozoítos e cistos) 2. Amebas - Fagocitose 3. Nematóides do solo |
| 20/02 (quinta) | Teórica:
Helmintos - Introdução Nematóides 1 (transmitidos por ovos contendo larvas) Prática: 1. Nematóides 1 2. Nematóides do solo - continuação |
Mini-teórica: eletroforese
de proteínas, western-blotting,
Prática: 1. Eletroforese de proteínas - nematóides (CEW1) 2. Coloração de proteínas com Coomassie blue 3. Estern blotting 4. Nematóides de insetos |
| 21/02 (sexta) | Prática:
1. Immunoblotting 2. Nematóides de Plantas |
Teórica: Nematóides
2 (transmitidos por larvas, com ou
sem vetores) Prática: 1. Nematóides 2 2. Immunoblotting (continuação) |
| 24/02 (segunda) | Teórica: Cestóides
Prática: Cestóides |
Mini-teórica: Expressão
gênica diferencial
Prática: Caenorhabditis elegans fluorescente |
| 25/02 (terça) | Teórica: Schistosoma
mansoni
Prática: S. mansoni (ovos, larvas, adultos e granulomas) |
Teórica: Métodos
indiretos de detecção de parasitas.
Sorologia Prática: IFI, Immunoblotting |
| 26/02 (quarta) | Seminários: Vacinas | Teórica: Resposta imune
e Mecanismos de Escape de
parasitas Exercícios: Controle e Profilaxia de Parasitoses |
| 27/02 (quinta) | Bioinformática |